殺傷性T細胞（CTL）識別靶細胞形成免疫突觸后會脫顆粒，通過穿孔素、顆粒酶殺滅靶細胞，此次整理分享一篇文章，看一下CTL脫顆粒之后是如何“停火”的。具體內容如下：

作者首先追蹤了CTL和靶細胞接觸后微絲的變化，發現：CTL接觸靶細胞后接觸點處微絲（綠色）密度會下降，而后又恢復；接觸點微絲密度的降低是伴隨著靶細胞膜破損發生的（上圖紅色標記的是靶細胞膜；下圖紅色是靶細胞表達了Ca2＋感應蛋白，當靶細胞膜破損后鈣離子內流，細胞變紅）

靶細胞膜破損和CTL脫顆粒有關，所以作者又同時追蹤了一下脫顆粒（穿孔素、顆粒酶由溶酶體釋放，所以作者追蹤的溶酶體，用的是溶酶體marker LAMP1）和微絲行為，發現微絲密度降低是伴隨著脫顆粒發生的，當脫顆粒逐漸完成，微絲密度恢復 – 暗示微絲給脫顆粒“讓路”，脫完顆粒微絲恢復

作者又用SIM超分辨，在脫完顆粒、微絲恢復的細胞上看了一下微絲和溶酶體的關系，發現：恢復后的微絲擋住了溶酶體，暗示恢復后的微絲可物理分隔CTL效應分子和靶細胞

也用共聚焦看了一下，依然發現在離開微絲一定距離處才有溶酶體分布，再次暗示微絲阻隔溶酶體

實際驗證一下微絲阻隔溶酶體，怎么驗證呢？用微絲解聚藥latrunculin A抑制微絲（紅色）后發現CTL脫顆粒（綠色）增加，說明微絲的確是有阻擋脫顆粒的作用

微絲有調控脫顆粒的作用，那什么在免疫突觸附近調控微絲呢，查閱文獻發現PIP2有相關作用，實際看一下：PLCγ1是種磷脂酶，可將PIP2轉化為IP3和DAG，使用PLCγ抑制劑U－73122（U－73343算是陰性對照）阻斷PIP2（綠色）降解后微絲密度（紅色）不再降低，暗示PIP2和微絲密度降低相關；PLCγ被抑制后PIP2是不會少了，但IP3、DAG會變少，為了排除這兩種產物的影響，作者在PLCγ抑制組有加了P／i（PMA和ionomycin） rescue IP3、DAG的缺陷，發現并不會引起微絲密度降低，說明不是IP3、DAG調控的免疫突觸附近微絲密度降低 – 綜合起來暗示TCR被激活后PLCγ調控PIP2，進而影響微絲

換個系統繼續看PIP2對微絲的影響：作者構建了一個雷帕霉素誘導召集可轉化PIP2酶的系統，加入雷帕霉素后成功召集了5－Ptase，可見隨著5－Ptase的召集增加，微絲密度下降，再次暗示PIP2和微絲密度的相關性

前面看了PIP2降微絲密度跟著降，脫顆粒后微絲密度會恢復，微絲恢復后PIP2怎么變呢？實際看一下，發現微絲恢復PIP2也恢復

“搞”PIP2微絲跟著變，“搞”微絲PIP2會如何呢？用藥物解聚微絲后，發現PIP2水平并沒發生變化，暗示PIP2在微絲的上游調控微絲

脫顆粒時微絲密度降低，脫完微絲密度恢復，暗示脫顆粒也會調控微絲，作者在脫顆粒缺陷的細胞（Rab27a缺陷）上觀察微絲行為，發現雖然細胞無法脫顆粒，但微絲密度仍然會下降，且無法恢復 – 暗示顆粒酶、穿孔素的分泌會影響微絲密度的恢復

挺簡單，觀察了CTL發射“炮彈”前后微絲的行為，發現了幾個調控微絲的因素（PIP2、顆粒酶穿孔素的釋放），但這些因素如何聯動并不知道，并沒有挖到互作層面，理清分子鏈條 – 可以做，但不知道有沒有人做過，畢竟這是篇2017年的文章。不過不妨礙“細胞生物學發現一些細胞行為的關聯，分子生物學去找關聯細胞行為的分子鏈條”這一思路對科研工作的指導……

Alex T． Rittera， Senta M． Kapnickc， Sricharan Murugesand， Pamela L． Schwartzbergc， Gillian M． Griffiths and Jennifer Lippincott－Schwartza，． Cortical actin recovery at the immunological synapse leads to termination of lytic granule secretion in cytotoxic T lymphocytes ［J］． PNAS， July 17， 2017．

主題：CNS前沿文獻追蹤 – 病毒衣殼在細菌內部的運動模式

時間：9月2日 周三  19：00 － 20：00

主講人：于博士

參考文獻：

Vorrapon Chaikeeratisak， Kanika Khanna， Katrina T． Nguyen， Joseph Sugie， et al． Viral Capsid Trafficking along Treadmilling Tubulin Filaments in Bacteria ［J］．Cell． 2019．